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Bioinformá)ca  y  bio/sica  aplicada  a   la  inmunología  y  al  desarrollo  de   vacunas  

Mirko  Zimic,  PhD.  MSc.  MHS.   Unidad  de  Bioinformá
 

1  

Bioinformatics Key Question

2  

1  

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Antigen Presentation Pathways

3  

Methods to Identify Epitopes 1.   Immunochemical  methods            (e.g.  ELISA)    

2.  X-­‐ray  crystallography:  Ag-­‐Ab  complex  is   crystallized.  The  contact  residues  on  the  Ag   are  considered  as  the  epitope.  

  3.  Predic)on  methods:    

•  Based  on  the  data  of  experimentally   established  epitopes  to  find  common   sequence  and/or  structure  paXern(s).   •  Develop  computer  algorithms    that  can   predict  if  a  given  anonymous  protein   sequence  has  similar  paXerns.  

Epitope

4  

2  

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Sequence-Based Approaches to Predict HLA Binding Specificity Simple Motifs

•  Allowed/non allowed amino acids

Scoring Matrices

•  Amino acid preferences based on multiple epitope alignment

Hidden Markov models

•  Peptide statistics from sequence alignment

SVMs and neural networks

•  Can take sequence correlations into account 5  

Types of Epitopes 1.  Sequential / Continuous epitopes:

•  •  • 

Recognized by both B & T cells Linear peptide fragments Amphipathic helical 8-12 mer

2. Conformational / Discontinuous epitopes:

•  •  •  • 

Recognized by B cells Non-linear discrete amino acid sequences, Come together due to folding Exposed 15-22 mer 6  

3  

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MHC 3D-Strucure

•   Polymorphic   •   Bind  short  pep
•   Polymorphic   •   Bind  pep13  A.A   • Open  ends  

7  

MHC  class  I  Binding  Groove     •  2  anchor  posi
8  

4  

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MHC  class  II  Binding  Groove     •  α-­‐chain  is  shown  in   dark-­‐blue,  and  the   β-­‐chain  in  light  blue.   •  The  pep
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Predic
10  

5  

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Contact  Residues  Define  Pocket  Profile  

6  

1   4  

VGFT  

9  

FLEQRAY   WCSVDYW   LFECLRA   11

Pocket  profile    MHC-­‐II   P1,  P2,  P3:  (cadena  alfa):  monomórficos     (excepción:  P1    VàG  )      

P5,  P8:  cadenas  laterales  de  los  epítopes  ´no ´  interactúan  con  el  ´groove´     P4,  P6,  P7,  P9:  (cadena  beta):  polimórficos:   dan  la  especificidad  

Sturniolo  et.  Al.   NATURE  BIOTECHNOLOGY  VOL  17  JUNE  1999   h"p://biotech.nature.com  

12  

6  

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13  

Subs
Fig.  1  

   A  

   B   Unknown  Target    Allele  

   A  

     B   Human  DRB*0101  Allele  

“Subs
14  

7  

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Composite  Method     Fig.  2  

A  

B   Target  MHC  Allele  

A  

C   Human  DRB*1301  

D  

B   Human  DRB*0801  

“Composite”  Method  -­‐  For  each  pocket  profile  within  the  submiXed  target   allele,  best  matching  pocket  profiles  within  the  human  database  would  be  iden<fied.  The   best  matches  would  then  be  combined  to  form  the  best  possible  “composite”  alleles    

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Anne  de  Groot  -­‐  EPIVAX  

Determine  Best  Subs
Allele   TARGET     DRB1*0101     DRB1*0301     DRB1*0401   .   .  

P1   VVFT

Iden)ty   P4   -RFDQAAY

Iden)ty   P6   -PRDYIAA

Iden)ty   --

P9   WYSVDYW

Iden)ty   --

VGFT

75%

FLEQRAY

42.85% LFECLRA

14.29%

WCSVDYW

85.71%

VVFT

100%

SYDQKRY

42.85% SSDYLKR

42.85%

EYNVDYW

71.42%

VGVT .   .  

75% .   .  

HFDQKAY .   .  

71.42% VHDYLKA .   .   .   .  

42.85% .   .  

EYYVDYW .   .  

71.42% .   .  

Best  Subs
Best  Composite   Pocket  1  -­‐  DRB1*0301  (100%)   Pocket  4  -­‐  DRB1*0401  (71.42%)   Pocket  6  -­‐  DRB1*0401  (42.85%)   Pocket  9  -­‐  DRB1*0101  (85.71%)   =  74.99  %  iden)ty   16  

8  

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Predic
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18  

9  

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IEDB  Database  

19  

SYFPEITHI  Database  

20  

10  

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Weight Matrix

Morten  Nielsen  -­‐  CBS  

21  

%Rank score

Morten  Nielsen  -­‐  CBS  

22  

11  

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Ra
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Metodología para predicción de vacunas multiepitópicas Allele Frequency Net Database (AFND)

Se determinarán los alelos más frecuentes para MHC-I y MHC-II de un área geográfica o grupo étnico específico, analizando los secuenciamientos de dichos genes en una muestreo aleatorio provenientes de diversas regiones del país.

1. Determinación de alelos más frecuentes Búsqueda del mejor alelo MHC humano sustituto

MHC-II Predicción de proteinas transmembrana y secretorias y la estructura

MHC Cluster

MHC-I

Filtros

SignalP-4

Predicción de Lipo-proteínas 2. Predicción de epítopes netMHCcons para MHC-I

NetMHCpan

Herramientas del Center for Biological Sequence Analysis (CBS)

netMHCIIpan para MHC-II

NetMHC 24  

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MHC-I y MHC-II

En este filtro se buscará seleccionar los epítopes promiscuos, es decir epítopes que son reactivos con el mayor número de alelos MHC representativos de la población peruana.

3. Buscar epítopes promiscuos para múltiples alelos

4. Buscar epítopes conservados

Se procederá a filtrar solo aquellos epítopes que estén conservados en todos los genomas en estudio, para lo cual se usará la herramienta BLAST.

5. Filtrado del proteoma del individuo a inmunizar Los epítopes seleccionados serán filtrados del proteoma, para que de esta manera, la vacuna multiepitópica no incluya epítopes tolerantes.

Proteína Multiepitópica

6. Epitope-Sorting para Construir la proteina multiepitópica

Epitope 1 Epitope 2 Epitope 3 SB SB SB KNLLITDPPKPIKVK IKYIIEDQNIPLSYQ SQPLLADLPNIVLPF A continuación serán agrupados para formar una proteína multiepitópica de 12–16 epítopes con la condición que no se aparezcan epítopes 'artefactos' en las uniones de los pares de epítopes. Una vez diseñada la proteína multiepitópica, se sintetizará un gen en el plásmido pet28a el cual codificará para la proteína mencionada. La proteína será expresada en E. coli y purificada como proteína recombinante por medio de una cromatografía por afinidad.

PIKVKIKYIIEDQN

* SB = strong binding

SB Epítope artefacto 25  

26  

13  

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•  Algunos  ejemplos  de  diseño  de  vacunas:   •  ¿Vacunas  humanas?      Costoso,  largo  
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Cys
 

(Definitive host) Ingestion of infected pork, poorly cooked: Taeniasis

 

 

     

Ingestion of T. solium eggs by fecal contamination: Human cysticercosis

 

Pig  

 

(Intermediate host)

   

   

 

 

   

Ingestion of T. solium eggs or proglottids: Porcine cysticercosis

   

 

28  

14  

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Epidemiology  –  Life  Cycle   Human  

 

(Definitive host) Ingestion of infected pork, poorly cooked: Taeniasis

 

 

     

 

Ingestion of T. solium eggs by fecal contamination: Human cysticercosis

 

Pig  

 

(Intermediate host)

   

   

 

   

Ingestion of T. solium eggs or proglottids: Porcine cysticercosis

   

 

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Epidemiology  –  Life  Cycle   Human  

 

(Definitive host) Ingestion of infected pork, poorly cooked: Taeniasis

 

 

     

Ingestion of T. solium eggs by fecal contamination: Human cysticercosis

 

Pig  

       

   

 

 

(Intermediate host)

   

Ingestion of T. solium eggs or proglottids: Porcine cysticercosis

   

30  

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Epidemiology  –  Life  Cycle   Human  

 

(Definitive host) Ingestion of infected pork, poorly cooked: Taeniasis

 

 

     

Ingestion of T. solium eggs by fecal contamination: Human cysticercosis

 

Pig  

   

 

 

     

(Intermediate host)

   

Ingestion of T. solium eggs or proglottids: Porcine cysticercosis

   

 

31  

Epidemiology  –  Life  Cycle   Human  

 

(Definitive host) Ingestion of infected pork, poorly cooked: Taeniasis

 

 

     

Ingestion of T. solium eggs by fecal contamination: Human cysticercosis

 

Pig  

   

 

 

       

(Intermediate host)

   

Ingestion of T. solium eggs or proglottids: Porcine cysticercosis

   

32  

16  

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Single  cyst  infec
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Purifica
Cyst   iden<fica
Cyst   fluid  

Ethanol   concentra
Size  exclusion   chromatography  

Ion  exchange   chromatography  

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Tsol18  a  good  vaccine      

-­‐A  secretory  protein     -­‐Fibronec
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MHC class I profile: Tsol18

Immunogenicity

0.6 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 0 1

9

17

25

33

41

49

57

65

73

81

89

97 105

Residue

Tsol18

IFVPYLRCFAL EEIKVKVEK VIIRDL

EEIKVKVEKIFVPYLRCFALVIIRDL     36  

18  

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Placebo                            Vacuna   1

0

200

400

600

800

0

mean of healthy mean of petequias

mean of degenerated mean of cicatriz

Gra phs by Group

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Análisis  del  genoma  completo  de     Taenia  solium       •  Genomas  de  2  regiones  del  Perú,  Huancayo  y  Puno.   •  Los  genomas  fueron  secuenciados  en  colaboración  con  el  NIH   –  Na
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Secuenciamiento  y  ensamblaje   454   Sequencing  

Illumina   Sequencing  

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Development  of  a  ´Pig  Matrix´  

40  

20  

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42  

21  

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Equipo de trabajo EQUIPO BIOINFORMÁTICO David Requena, MSc(c) Hugo Valdivia, BSc Manuel Ramirez, BSc Andrés Gutierrez, PhD(c) Ana Dávila, E.E. Basilio Cieza, BSc(c) Sebastián Carrasco, BSc(c) Vladimir Espinoza, BSc(c) Eduardo Gushiken, BSc(c) Carlos Bueno, BSc(c)

COLABORADORES Robert Gilman, MD, Dr.TropMed (Johns Hopkins University) Manolo Fernandez, MV, PhD (FARVET) Patricia Sheen, PhD (UPCH) Manuela Verástegui, PhD (UPCH) Héctor García, MD, PhD (UPCH) Armando Gonzales, MV, PhD (UNMSM) Annie De Groot, MD, PhD (Univ. Rhode Island, EPIVAX) Morten Nielsen, PhD (CBS – Center of Biological Sequence Analysis)

EQUIPO MOLECULAR Mónica Pajuelo, PhD(c) Manuel Mendoza, MSc(c) Nancy León, MSc(c) Isidro Antitupa, MSc(c) Reynaldo Ponce, MSc(c) Katherine Lozano, MSc(c) Jose Luis Roldán, BSc

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coloquio-2013-09-26-Zimic.pdf

Recognized by both B & T cells. • Linear peptide fragments. • Amphipathic helical 8-12 mer. 2. Conformational / Discontinuous epitopes: • Recognized by B cells.

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